1. 研发背景
进口磁珠用量大,价格高,实验难以开展?
翊圣DNA分选磁珠,您值得信赖
DNA片段纯化与分选是高通量测序中文库制备的必要步骤。传统DNA片段纯化与分选主要采用切胶回收方式,操作繁琐,通量低,无法满足日益增长的高通量测序市场的需求。新型磁珠技术的出现,打破了传统技术的缺陷,实现了简单化以及自动化操作。目前,市场中磁珠类产品以AMPure XP为代表,性能优异,但其高昂的价格带来的生产成本的提高,也令许多测序公司感到巨大的压力。
翊圣生物科技公司,以需求和服务为导向,秉承“Good Science, Good Products”理念,依托来自国内一线科创新研院所研发人员组成的强大科研团队,遍访世界探寻最优质的试剂与原料,历经无数次的体系优化与实验验证,开发出可无缝替代AMPure XP的产品——Hieff NGSTM DNA Selection Beads。
2. 产品描述
完美替代AMPure XP Beads
Hieff NGS
TM DNA Selection Beads是基于SPRI(Solid Phase Reversible Immobilization)原理制备,具有优秀的分选能力和超强的纯化效率。在操作方法,大小分布和文库产量方面均与AMPure XP Beads高度一致,是高通量测序文库构建的必备产品。此外,
翊圣生物具有严格的生产工艺,保证提供的每批次产品都经过严格的质量控制和功能验证,最高程度保障产品优异性能与批间稳定性。
1)精准分选
图1 Hieff NGSTM DNA Selection Beads可精确地分选所需的DNA片段
样本:片段化大肠杆菌基因组DNA。检测仪器:Agilent 2100 Bioanalyzer。
2)高效回收
图2 Hieff NGSTM DNA Selection Beads可高效回收文库产物
在相同分选条件下(1:0.60×/0.20×;2:0.55×/0.15×),Hieff NGSTM DNA Selection Beads的DNA回收产量与AMPure XP Beads表现一致。
3)文库构建
图3 Hieff NGSTM DNA Selection Beads进行文库构建
Agilent 2100 Bioanalyzer检测结果显示:在相同分选条件下,Hieff NGSTM DNA Selection Beads与AMPure XP Beads所得到的文库大小一致。建库样本: 大肠杆菌基因组DNA。
4)操作便捷
图4 Hieff NGSTM DNA Selection Beads操作方法与AMPure XP Beads完全一致
5)优异性价比
图5 Hieff NGSTM DNA Selection Beads与其他品牌同款产品价格比对
3. 产品应用
高通量测序DNA片段的纯化和分选。PCR或酶切DNA产物的纯化。
4. 产品使用案例
1)案例一
实验一:分别用AMPure XP磁珠和Yeasen Hieff磁珠以1.2×体系回收起始量为20 μL(2.5 ng/μL)的20 bp DNA ladder(20DL),并最后溶于20 μL体系,以起始20DL为对照,使用Agilent Bioanalyzer 2100对比检测片段分选效果。
结果:见图6。
结论:Yeasen Hieff磁珠和AMPure磁珠对片段的分选能力一致,回收能力一致。
图6 20DL Agilent 2100检测图
红线为等量对照组20DL,蓝线为AMpure XP磁珠回收产物,绿线为Yeasen Hieff磁珠回收产物。
实验二:分别用AMPure XP磁珠和Yeasen Hieff磁珠以0.6×/1.8×体系回收起始20 μL(2.5 ng/μL)的gDNA,并最后溶于20 μL体系,以起始gDNA为对照,使用Agilent Bioanalyzer 2100对比检测大片段分选效果。
结果:见图7。
结论:Yeasen Hieff磁珠和AMPure磁珠对片段的分选能力一致,0.6×/1.8×片段回收能力AMPure相对Hieff磁珠稍高。
图7 gDNA Agilent 2100检测图
红线为等量对照组gDNA,蓝线为AMpure XP磁珠回收产物,绿线为Yeasen Hieff磁珠回收产物。
2)案例二
实验:按照Agilent SureSelect Target Enrichment System 标准建库步骤进行二代测序文库的构建,分析AMPure XP磁珠和Yeasen Hieff磁珠在建库过程中的表现。使用磁珠的步骤分别为:1)基因组打断后的纯化;2)片段补平反应后纯化;3)3’加A后样品的纯化;4)加Adaptor后样本的纯化;5)文库PCR后样本的纯化;6)文库杂交捕获后进行文库的wash, 加Index并进行文库PCR以后样本的纯化。
样本:人外周血DNA,片段长度约150 bp。
文库定量:Qubit 3.0 Syetem。
结果:见表1。
结论:Yeasen Hieff磁珠与AMPure XP磁珠均可有效建库。根据前期经验值判断,Hieff磁珠性能甚至优于AMPure XP。
表1 文库定量结果
| 文库PCR后定量(ng/μL) |
杂交捕获后文库PCR后定量(ng/μL) |
二代测序的种类 |
Yeasen Hieff磁珠 |
AMPure XP磁珠 |
| 31.6 |
4.72 |
全外显子测序 |
是 |
|
| 54.4 |
5.16 |
全外显子测序 |
是 |
|
| 82 |
1.59 |
Panel测序 |
|
是 |
| 60 |
2.95 |
Panel测序 |
|
是 |
| 58.8 |
2.62 |
Panel测序 |
|
是 |
| 71 |
1.79 |
Panel测序 |
|
是 |
| 74.8 |
1.49 |
全外显子测序 |
|
是 |
| 60.2 |
2.68 |
全外显子测序 |
|
是 |
| 48.6 |
1.39 |
全外显子测序 |
是 |
|
| 52.2 |
2.63 |
全外显子测序 |
是 |
|
| 46.6 |
1.9 |
全外显子测序 |
是 |
|
| 61 |
1.96 |
全外显子测序 |
|
是 |
3)案例三
实验:针对同一样本进行50 μL体系扩增,将扩增产物平均分为两份,分别使用Yeasen Hieff磁珠和AMPure XP磁珠进行纯化并建库上机测序。利用标准的生物信息学分析流程,针对测序结果分析比较两种磁珠的使用效果。
样本:微生物宏基因组,命名为CK。
结果:如图8所示,使用Yeasen Hieff磁珠和AMPure XP磁珠获得相同的测序数据量;如图9所示,使用Yeasen Hieff磁珠和AMPure XP磁珠获得一致的样本微生物门属水平分布。
结论:Yeasen Hieff磁珠和AMPure XP磁珠在二代测序建库中使用,性能一致。
图8 测序数据量图谱
CK1为使用AMPure XP磁珠,CK2为使用Yeasen Hieff磁珠。
图9 样本中微生物种属及丰度分布
CK1为使用AMPure XP磁珠,CK2为使用Yeasen Hieff磁珠。
4)案例四
实验:应用Yeasen Hieff磁珠于全基因组文库构建,根据所得文库的产量与质量,分析Yeasen Hieff磁珠性能。
样本:WGC Sample
建库试剂盒:Illumina Truseq Nano DNA Library Prep Kit
仪器:Agilent Bioanalyzer 2100和Qubit 3.0 Syetem
表2 实验样本信息
| Product |
WGC Library ID |
DNA Adapter Index |
| Hieff NGSTM DNA Selection Beads |
GCL030026-3 |
3 |
| GCL030032-3 |
8 |
结果:所得文库使用Bioanalyzer和Qubit检测其质量和浓度。由表3,所得文库浓度分别为5.42 ng/μL和5.88 ng/μL;由图10,两份样本所得文库均为单一条带,无杂峰,片段大小符合测序要求。
结论:Yeasen Hieff磁珠应用于文库构建中,性能卓越。
表3 文库定量结果
| WGC Library ID |
Qubit Conc.(ng/μL) |
| GCL030026-3 |
5.42 |
| GCL030032-3 |
5.88 |
图10 文库Agilent Bioanalyzer 2100检测图
5. 目前在用单位
主要有:中国科学院生物物理研究所,中科院上海生命研究院,暨南大学,上海交通大学,武汉大学,中山大学,华中农业大学,江汉大学等多家单位。
6. 参考文献举例
【1】DeAngelis M M, Wang D G, Hawkins T L. Solid-phase reversible immobilization for the isolation of PCR products[J]. Nucleic acids research, 1995, 23(22): 4742.
【2】Fisher S, Barry A, Abreu J, et al. A scalable, fully automated process for construction of sequence-ready human exome targeted capture libraries[J]. Genome biology, 2011, 12(1): R1.
7. 常见问题
Q1:产品的原理是什么?
A1:产品是基于SPRI(Solid phase reverse immobilization)原理制备的,其在特定条件下,可选择性吸附不同片段大小的DNA。亲和吸附分选
Q2:产品的主要应用是什么?
A2:产品主要应用于高通量测序DNA片段的纯化和分选。对于PCR或者酶切DNA产物的纯化也可以使用,可以有效去除dNTP,引物,引物二聚体,盐离子等杂质。
Q3:产品可以重复使用吗?
A3:产品不可以重复使用,乙醇洗脱步骤将影响磁珠表面活性基团性能。
Q4:与AMPure XP相比,怎么样?
A4:我们的产品是国内同类产中最-好的,制备原材料完全进口,可以完美替代AMPure XP Beads。在使用方法,文库大小分布和回收效率上,与AMPure XP Beads完全一致,您可以直接按照AMPure XP Beads的操作方式使用,无需摸索条件。
Q5. DNA回收效率低。
A5:可能原因:DNA与磁珠比例不满足分选要求;乙醇浓度低。80%乙醇需现用现配,放置时间过久,可能由于乙醇挥发,造成浓度降低,影响洗脱效果;洗脱溶液体积不足;洗脱溶液孵育时间过短;磁珠过度干燥。
建议:按照分选推荐比例添加磁珠;80%乙醇现用现配;洗脱溶液需完全覆盖磁珠;磁珠应于洗脱液中按规定时间孵育,常规为5分钟;切勿室温干燥磁珠大于10分钟,过度干燥将降低洗脱效率。
Q6. 纯化后DNA在后续实验中表现不理想。
A6:由乙醇残留引起。确保在最后一步洗涤结束后,溶液中无残留乙醇。磁珠可于室温干燥5-10分钟,使乙醇完全干燥。
Q7. 纯化DNA中有磁珠残留。
A7:可能原因:磁珠分离时间过短或磁力器磁力较弱;洗脱步骤中,吸取上清速度过快。
建议:增加分离时间或选用磁力强的磁力器,确保磁珠被磁力器全部吸附;缓慢吸取上清,注意切勿吸取磁珠。
8. 订购信息
| 产品 |
货号 |
规格 |
目录价格(元) |
| Hieff NGSTM DNA Selection Beads(Superior AMPure XP alternative) |
12601ES03 |
1 mL |
296.00 |
| 12601ES08 |
5 mL |
986.00 |
| 12601ES56 |
60 mL |
6286.00 |
| 12601ES75 |
450 mL |
26186.00 |
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货号 |
规格 |
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10×100 µL |
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4238.00 |
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12201ES24 |
24 libraries |
5296.00 |
| 12201ES96 |
96 libraries |
17626.00 |
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12301ES24 |
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1 mL |
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| 12602ES56 |
60 mL |
4266.00 |
| 12602ES75 |
450 mL |
38566.00 |
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12603ES24 |
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616.00 |
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2066.00 |
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